ЭПИЗООТОЛОГИЧЕСКИЕ ОСОБЕННОСТИ
Спектр патогенности в естественных условиях. Вирус монопатогенен, в естественных условиях поражается только КРС. Овцы, козы, свиньи и лошади невосприимчивы.
ДИАГНОСТИКА
Для постановки диагноза используют ИФ. Специфическая флюоресценция обнаруживается в цитоплазме лейкоцитов, взятых от естественно больного скота до снижения лихорадки. Результаты ИФ совпадают с данными серологических тестов. Вирус выделяли на белых мышах при инфицировании их гепаринизированной кровью, полученной от экспериментально заражённых шт. 45733 вируса ЭЛ, выделенным в Австралии и адаптированным к культурам клеток. Для этого суточных белых мышат-сосунов заражают гепаринизированной кровью интрацеребрально в дозе 0,01-0,02 мл. Для последующих пассажей используют 10%-ную суспензию мозга больных и павших мышах предыдущего пассажа. На 5-7-е сут у мышат, инфицированных кровью, наблюдали повышенную возбудимость, которая сменялась угнетением и малоподвижностью, отставанием в росте и развитии. При первичном заражении на 7-10-е сут погибало 27% заражённых мышат. После 3-х последовательных пассажей патогенность возбудителя повышалась, и на 4-м пассаже гибель всех инфицированных мышей наступала через 2-3-е сут. Интрацеребральное заражение мышат-сосунов шт.45733 вируса ЭЛ вызывало появление клинических признаков болезни на 4-5-е сут и ги- бель 64% животных на 7-9-е сут.
На 2-ом пассаже инкубационный период сокращался до 2 сут и погибали все заражённые мыши. Симптомы проявления болезни у мышат-сосунов, инфицированных шт. 45 733 вируса ЭЛ, кровью естественно заболевших и экспериментально заражённых животных, были идентичны.Для выделении вируса используют первично-трипсинизированную культуру клеток ПТ, перевиваемые линии клеток ПО и ВНК-21, гепаринизированную или дефибринированную кровь больных животных (цельную и разведённую 1:10), 10%-ную суспензию мозга больных мышат и шт.45 733 вируса ЭЛ. Идентификацию выделенного агента в PH осуществляли в пробирочной культуре клеток ВНК-21 с использованием вируса, выделенного в культуре клеток из крови больных животных и мозга инфицированных мышат, шт. 45733 вируса ЭЛ, сыворотки крови, полученной от переболевших и находившихся в контакте с больными животных, а также сыворотки специфической к шт.45733 вируса ЭЛ. Диагностические сыворотки к вирусам ящура, везикулярного стоматита, ВД-БС, ИРТ и оспы КРС служат гетеро- логическим контролем.
ИММУНИТЕТ И СПЕЦИФИЧЕСКАЯ ПРОФИЛАКТИКА Иммунитет не изучен. В Японии удовлетворительные результаты получены при применении аттенуированной вакцины. Оптимальный интервал между введениями составлял 1-5 нед. Из вируссодержащей крови, обработанной кристаллвиолетом, удалось получить инактивированную вакцину, которую вводят 2-кратно подкожно по 10 мл с интервалом 3-7 дн. В крови привитых животных образуемыми ВНА, выявляемые более 2-х лет. Кроме того, предложена ГОА-формолвакцина с использованием вируса, репродуцированного в культуре HmLu-1. При 4°С вакцина сохраняет активность в течение 9 мес. Она безвредна для стельных коров. Рекомендуется двукратная иммунизация с последующей ревакцинацией через год поздней осенью или ранней весной. Для получения гипериммунной сыворотки КРС иммунизируют вируссодержащей дефибринированной кровью, суспензией селезёнки и лимфоузлов, взятых во время лихорадки. Гипериммунная сыворотка в дозе 250 мл предохраняет животное от прямого заражения.
Перспективна и живая вакцина, но это связано с большими трудностями, так как в гетерогенной биологической системе вирус быстро теряет свою патогенность и иммунизирующие свойства. Серийное пассирование вируса ЭЛ в линии клеток HmLu-1 ведёт к быстрой аттенуации его в отношении КРС. Аттенуированный вирус не вызывает у животных образования ВНА. Однако максимальное накопление их и устойчивость к заражению у КРС происходит после подкожного введения аттенуированного вируса (около 105 ТЦД50/Мл) и затем через 2-4 нед после внутримышечной инъекции формолвакцины. Иммунизация КРС по такой схеме безвредна даже для стельных коров (12).В 1982-1984 гг. в Клинсвенде проведена оценка иммунных реакций 24 стад КРС после различных схем вакцинации против ЭЛ. Использовали вакцину, приготовленную на основе шт. 919, аттенуированного на телятах и клетках Vero, в сочетании с адъювантом QuilA и гелем ГОА. Две последовательных инокуляции вакцины, смешанной непосредственно перед введением с адъювантом QuilA, индуцировали самый высокий титр ВНА и обеспечивали высокую защиту от естественного контрольного заражения вирулентным вирусом, по крайней мере, в течение 12 мес. В то же время после 1-кратного введения вакцины с этим адъювантом и 2-кратного введения титр АТ был значительный, но не обеспечивал напряжённой защиты от вирулентного вируса. Отмечена чёткая взаимосвязь титра ВНА и уровня иммунозащиты (18). При перемежающемся пассировании КРС - культура клеток ВНК-21 получен аттенуированный вариант вируса ЭЛ, который утратил вирулентность для КРС, но сохранил иммуногенные свойства. Минимальная иммунизирующая доза равна 100 ТЦД50, а прививочная - 10000 ТЦД50. После 1-кратной подкожной вакцинации иммунитет у КРС наступает через 21 дн и длится не менее 6 мес (2).
СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ 1.
Диев В.И. и др. Сб. н. тр. ВНИИЗЖ., 1995 .128. 2.Кулешбекова Ш.К. Автореф. канд. дисс., ВНИИВВиМ, Покров, 1983. З.Курченко Ф.П. и др. Ветеринария, 1991, 2 :26. 4.
Курченко Ф.П. Карантинные и малоизвестные бол. жив., М, 1983. 5.Курченко Ф.П. и др. Ветеринария, 1986, 1 :26. б.Мирзаев Д. и др. С. х. Таджикист.,1984, 12. 7.Пурэвцэрэн Б. и др. Труды НИИЖ, Улан-Батор, 1982, 25. 8.Сюрин В.Н. и др. Част. вет. вирусология., М., Колос, 1979. 9.ЦионР.А., Раевский A.A. Ветеринария, 1950, 2. lO.Baj Wenbin et.al. Austr J Biol Sci,1987, 40 :7. ll.George T.D. et.al. Austr Vet, 1977. 12.1anaba J. Bull Off Inst Epizoot, 1973, 79. 13.McKeras J.M. et.al. Bull Covinc Sci Ind Res 1940 :136. 14.0gava T. et.al. J Vet Med Sci, 1992, 54, 5 :923. 15.Ralph W. et.al. Ruraige Res, 1984 :122. 16.Ralph W. Viral Research, 1984 :28. 17.Uren M.F. Austr Vet J, 1989, 66 :8. 18.Vanselow B.A. et.al. Vet Microbiol, 1995, 46, 1/3 :141.
Еще по теме ЭПИЗООТОЛОГИЧЕСКИЕ ОСОБЕННОСТИ:
- ЭПИЗООТОЛОГИЧЕСКИЕ ОСОБЕННОСТИ
- ЭПИЗООТОЛОГИЧЕСКИЕ ОСОБЕННОСТИ
- ЭПИЗООТОЛОГИЧЕСКИЕ ОСОБЕННОСТИ
- ЭПИЗООТОЛОГИЧЕСКИЕ ОСОБЕННОСТИ
- ЭПИЗООТОЛОГИЧЕСКИЕ ОСОБЕННОСТИ
- ЭПИЗООТОЛОГИЧЕСКИЕ ОСОБЕННОСТИ
- ЭПИЗООТОЛОГИЧЕСКИЕ ОСОБЕННОСТИ
- ЭПИЗООТОЛОГИЧЕСКИЕ ОСОБЕННОСТИ
- ЭПИЗООТОЛОГИЧЕСКИЕ ОСОБЕННОСТИ
- ЭПИЗООТОЛОГИЧЕСКИЕ ОСОБЕННОСТИ
- ЭПИЗООТОЛОГИЧЕСКИЕ ОСОБЕННОСТИ
- ЭПИЗООТОЛОГИЧЕСКИЕ ОСОБЕННОСТИ I
- ЭПИЗООТОЛОГИЧЕСКИЕ ОСОБЕННОСТИ
- ЭПИЗООТОЛОГИЧЕСКИЕ ОСОБЕННОСТИ
- ЭПИЗООТОЛОГИЧЕСКИЕ ОСОБЕННОСТИ
- ЭПИЗООТОЛОГИЧЕСКИЕ ОСОБЕННОСТИ