ИММУНИТЕТ И СПЕЦИФИЧЕСКАЯ ПРОФИЛАКТИКА

Применение живых вакцин. В настоящее время для профилактики чумы КРС используют живые культуральные вакцины из аттенуированных IIIT.TCRV, ЛТ И К37/70. Шт. ЛТ получен во ВНИИВВиМ Н.И. Митиным, В.Н. Сюриным и др. путем адаптации японского лапинизированного шт. ЛЗ ВЧ КРС в культуре клеток почки теленка. Вирус прошел 1271 пассаж на кроликах и 60 пассажей в культуре клеток, в том числе 8 пассажей методом предельных разведений, для выделения генетически однородной и стабильной популяции. Шт. ЛТ безвреден для КРС и овец различных породных групп и возрастов. Сухая вакцина JTT обладает более высокой терморезистентностью по сравнению с вакциной из шт. TCRV. Она является генетически стабильной ввиду длительного пассирования вируса через организм кролика, что гарантирует полную безвредность препарата для КРС (12, 14). В Индии с целью замены культуры клеток почки теленка при массовом производстве вакцины аттенуированный штамм вируса был адаптирован к культуре клеток почки ягненка. Эта вакцина стандартизирована, её изготовляют в 11 странах Африки, 14 странах Азии и 2 странах Европы. Культуральная вакцина из шт. Kobete-02 не снижала биологическую активность ниже рекомендуемого ВОЗ и МЭБ уровня в условиях 5°С в течение 2-х лет, при 25°С - 56 дн, при 37°С - 7 дн (33).

Живые вакцины против чумы КРС исключительно эффективны и высокоэкономичны. У привитых животных может наблюдаться невысокая лихорадка, появляющаяся спустя 4-11 дн после прививки и продолжающаяся 1-11 дн.

Положительно зарекомендовала себя вторая отечественная живая вакцина из шт. К- 37/70, с помощью которой в 1991-1992 г. удалось оборвать вспышку инфекции в ряде районов Тувы (9). С использованием культуры клеток СПЖВ разработана более экономичная технология вакцины против чумы КРС из шт. К 37/70 (14а).

Инактивированные вакцины. Несмотря на общепризнанную эффективность живых вакцин против чумы КРС, идея создания инактивированного препарата не канула в лету. Так, для иммунизации овец против чумы КРС предложена инактивированная ГОА-вакцина с сапонином. Все овцы, иммунизированные данной вакциной, как в цельном виде, так и в разведениях 1:3 и 1:9, противостояли контрольному заражению вирусбм чумы КРС на 14-е сут после вакцинации (4).

Инактивированные вакцины, по-видимому, необходимо использовать для создания буферной зоны и на заключительном этапе искоренения инфекции после применения вирус- вакцины для ограничения возможного вирусоносительства. Инактивированная вакцина на основе аттенуированного шт. JTT ВЧ КРС , выращенного в перевиваемой клеточной линии почки сайгака, и применения в качестве инактиванга ионов меди, индуцирует достаточно напряженный иммунитет, вызывая образование ВНА , которые сохранялись в титре 1:19 в течение 12 мес (7).

Генно-инженерные вакцины. При использовании достижений генной инженерии созданы новые типы вакцин: субьединичная, синтетическая и векторная или рекомбинантная. Наиболее перспективна рекомбинантная, состоящая из живого вируса (например оспы) или бактерий (E.coli, дрожжи), в которых интегрирован ген, кодирующий протективный АГ ВЧ. Чаще для интеграции берут сайты тимидинкиназы или гемагглютинина (Н). В Японии сконструированы 3 типа рекомбинантной вакцины. Вакцина, имеющая модифицированный ген Н с промотором МР7,5 К, наиболее иммуногенна. ВНА к вирусам оспы и чумы персистиру- ют более года (23, 42). В США также получены рекомбинанты инфекционного вируса оспы, экспрессирующие гены ГА и растворимых поверхностных белков, включая белок слияния Fo ВЧ КРС. У привитых животных продуцировались ВНА, которые защищали животных при заражении вирусом в дозе в 1000 раз больше летальной. Вакцину применяют путем скарификации. Она термостабильна, безопасна (49, 50).

Серологическая оценка поствакцинального иммунитета. В результате сравнительного изучения эффективности 3 реакций (PH, РНГ А и РТГ А) для выявления АТ у животных, иммунизированных культуральной вакциной против чумы, было установлено, что наиболее выраженная корреляция титров АТ наблюдалась между PH и РТГ А, взятых через 2-

3 нед после вакцинации. В ответ на прививку живой вирусвакциной из шт. ЛТ КС и ВН АТ обнаруживаются на протяжении года. Максимальный титр их через 1 мес достигает 1:80 и 1:160-1:640 соответственно. Через год после прививки титр АТ соответственно снижается до 1:10-1:20 и 1:40-1:80. В ряде случаев ВНА обнаруживаются через 18 мес в титре 1:60- 1:320 к 200 ТЦД50. Материнские АТ сообщают иммунитет телятам на 6-7 мес, поэтому активную иммунизацию их можно проводить после этого срока. В тех случаях, когда титр ВНА и КСА равен 1:10 и выше, животные, как правило, устойчивы к экспериментальной инфекции ВЧ в дозе 103 ЛД50. Однако следует иметь в виду, что отсутствие КСА не свидетельствует об отсутствии специфического иммунитета, так как эти АТ у вакцинированных и переболевших животных исчезают раньше, чем специфическая резистентность и ВНА. Нет также прямой корреляции между специфической резистентностью вакцинированных животных и титром ВНА как в первые дни (3-5) после вакцинации, когда резистентность животных обусловлена феноменом интерференции, так и в последующие, когда резистентность при отсутствии КСА и ВНА, видимо, обусловлена механизмами клеточного иммунитета.