ПАРАМИКСОВИРУСНАЯ БОЛЕЗНЬ ПТИЦ -2 (ПМВ-2)

ХАРАКТЕРИСТИКА ВОЗБУДИТЕЛЯ

Морфология и химический состав. Вирус парагриппа кур был изолирован и идентифицирован в 1961 г. Р.А.Банковским и др. от цыплят с поражениями органов дыхания (13). Вирионы имеют форму палочковидную, шаровидную, отростчатую и мультигеномную. Шаровидные вирионы диаметром 120-300 нм. ПМВ-2 обладают ГА-свойствами. Мол. м РНК вируса 5,6-10бД. Вирус содержит 9 структурных полипептидов размером от 0,38 до 1,39 кД.

Хорошо репродуцировался в КЭ и клетках фибробластов КЭ. Экстраэмбриональная жидкость агглютинировала эритроциты цыплят.

Вирус не имел АГ родства с возбудителем НБ. Помимо вируса НБ, в группу парагрип- позных вирусов птиц входят вирусы Jucapia; PI (Ту) Ont. 6661/68, родственные вирусу парагриппа человека 2-го типа. Недавно от зяблика выделен новый парамиксовирус Bangor, АГ- отличный от предыдущих. Описаны штаммы парагриппозных вирусов, выделенные от попугаев: шт. 0121, Bangor finch/N 1 relang и Jucapia chicken California 160 (16).

Белок слияния F парамиксовирусов синтезируется в виде неактивного предшественника Fo, расщепляемого одной из протеаз клетки хозяина с образованием активного белка, состоящего из субъединиц F1 и F2 с дисульфидным мостиком между ними. Выявлен участок расщепления белка F вируса SV5, состоящий из аргининовых остатков (5).

Антигенная вариабельность и родство. В настоящее время известно 9 серологических вариантов парагриппа птиц: ПМВ-1 - цыпленок/Ньюкасл/27; ПМВ-2 - цыпленок /Калифор- ния/Юкейпа/56 и около 20 Юкейпа - штаммы индюков, попугаев, вьюрков, дроздов, цапель и др.; ПМВ-3 - индейка /Висконсин/68; ПМВ-4 - утка /Гонконг/ДЗ/75; ПМВ-5 - Австралийский зеленый длиннохвостый попугайчик/Япония/75; ПМВ-6 - утка/Гонконг/199/77; ПМВ-7 -

голубь/Теннеси/4/75; ПМВ-8 - гуеь/Делавер/1053/76; ПМВ-9 - утка/Нью-Йорк/22/78. Эти штаммы являются эталонными (12).

Наиболее распространенным сероваром ПМВ птиц является серовар ПМВ-1, который представлен штаммом различной инфекционности. От кур изолировано 5 штаммов ПМВ-1, различающихся по тропизму и спектру патогенности, а именно энтеротропный штамм (смертность 100%), респираторный и нейротропный (летальность 50%), нейротропный нелегальный и медленный асимптоматический, не вызывающий клинических признаков заболевания. Показана также гетерогенность популяции вирусов Юкейпа (18). В 1981 г. вирус Юкейпа (шт. В 8599) также изолирован от индюков (15). Степень АГ-родства между вирусами Сендай и паротита, Сендай и Юкейпа составляет 37 и 31% соответственно (17).

Проведенный анализ АГ- и биологических свойств 5 штаммов ПМВ-2, изолированных в СССР в 1986 г., показал их неоднородность как между собой, так и по отношению к эталонам ПМВ-2, что подтверждает происходящую эволюционную изменчивость их в современных условиях (2).

В 1956 г. в Калифорнии был выделен слабовирулентный вирус от больных цыплят, серологически отличавшихся от вируса НБ. Новый серотип ПМВ оказался широко распространенным на территории США. В течение 1975-1978 гг. в США, Японии, Нидерландах, Гонконге и ряде других стран было выделено еще несколько серотипов ПМВ от диких и домашних птиц разных видов. От домашних птиц выделено 5 серотипов вируса (12). Локализация вируса у естественно-восприимчивой птицы и вирусовыделение не изучены.

Антигенная активность. Установлена стабильность АГ-детерминант нуклеопротеинов ПМВ птиц серотипов 1 и 2 внутри серотипа и полное отсутствие перекрестных реакций с другими серотипами ПМВ (11). При инфекции индуцирует КСА, ВНА и анти-ГА, обладает нейраминидазой и гемолитической активностью (14).

Экспериментальная инфекция. Экспериментальная инфекция на цыплятах, как правило, не сопровождалась клинически выраженным заболеванием. Однако в сыворотках на 14-й день после инфицирования независимо от пути введения вируса, обнаруживались АТ в титре 1:160. Они выявляются и у контактно подсаженных цыплят к зараженной группе, что свидетельствует о высокой контагиозности казахстанских изолятов. Последние, в отличие ог эталонного шт. СССР/86, оказались апатогенными (6).

Культивирование. Выделенный в 1960 г. от птиц в разных регионах (США, Канада, СССР, Африка, Ирландия, ФРГ, Израиль) ПМВ культивируется в КЭ и куриных фибробла- стах, клетках почки обезьяны, вызывает образование синцитиев с эозинофильными цитоплазматическими включениями, которые содержат вирусные нуклеокапсида.

Ингибитор-чувствительность и резистентность/ Все штаммы ПМВ-2 оказались резистентными к сывороточным ингибиторам овец, свиней, уток и куликов и чувствительны к термолабильным ингибиторам сывороток морских свинок.

ГА свойства. Все ПМВ обладают ГА активностью (ПМВ-5 ГА эритроциты кур только после очистки и концентрации). Выделенные в 1987-1989 гг. 14 юкейпаподобных вирусов проявляли одинаковый спектр Г А активности, а именно, агглютинировали эритроциты кур, уток, морских свинок, крыс, белых мышей. Не агглютинировали эритроциты баранов, свиней, КРС и лошадей 4 полевых изолята юкейпаподобных вирусов, не связывались с эритроцитами белых мышей и крыс. Лучше всего ГА ПМВ-2 проявлялась с эритроцитами КРС, уток и морских свинок. Помимо ГА активности они различались и по скорости элюции с эритроцитов, на основании чего были разделены на 2 группы: быстроэлюцирующие (72/87, 307/88, 407/88) - характеризующиеся десорбцией 100% адсорбированного вируса, и слабо- элюцирующие (11 штаммов) с эритроцитов (лишь на 40-50%). ПМВ-3 (индюк Висконсин) агглютинирует эритроциты петуха (п-23, Р < 0,005) и морской свинки (п-7, Р < 0,005) и не вызывает гибели зараженных КЭ (1).

Г Ад свойства не изучены.

ЭПИЗООТОЛОГИЧЕСКИЕ ОСОБЕННСОТИ

Источники и пути передачи инфекции. Источник - больная птица, латентные виру- соносители. Заражение птицы происходит, в основном, контактным, аэрогенным или трансовариальным путями, не исключен алиментарный путь (16).

Спектр патогенности в естественных условиях. Заболевание регистрируется у кур. Однако к возбудителю чувствительны индейки, воробьи, попугаи. Появление вирусов Юкейпа в Казахстане, территория которого находится на пути миграции диких птиц, возможных переносчиков данных вирусов также указывает на дрейф вирусов Юкейпа. Приведенные факты не исключают возможности появления в ближайшие годы высокопатогенного юкейпаподобиого вируса и обусловливают необходимость систематического вирусологического надзора за ходом АГ-изменчивости ПМВ домашних птиц в различных регионах страны. ПМВ поражают птиц всех видов, однако распространение того или иного сероварианта в разных странах и среди птиц различных видов сильно варьирует. Установлена одновременная циркуляция миксо- и парамиксовируса среди декоративных птиц.

ДИАГНОСТИКА

ПМВ-2 широко циркулирует в птицеводческих хозяйствах страны, но мало изучен. Выделен оригинальный ПМВ-2, на основе которого изготовлен диагностикум. Все серовариан- ты ПМВ выделяются из патологического материала на 9-10-дн КЭ путем заражения в аллантоисную полость (кроме ПМВ-5, который выделяют заражением эмбрионов в амнион или культуру фибробластов КЭ.

Дифференциальная диагностика. Принадлежность выделенного изолята к ПМВ определяют в серологических реакциях (РТГА, PH) с помощью диагностического набора к 9 серовариантам, производимого отечественной биологической промышленностью. Показана возможность идентификации серотипов 1 и 2 ПМВ птиц с помощью ИФА (главным образом прямого варианта). Этот метод позволяет проводить детекцию АГ ПМВ в патологическом материале после предварительного накопления вируса в КЭ (4а).

СПЕЦИФИЧЕСКАЯ ПРОФИЛАКТИКА

Получена инактивированная вакцина PM-VAC против ПМВ инфекции голубей на основе шт. La Sota вируса НБ. В качестве адъюванта авторы использовали минеральное масло. Вакцина обеспечивает продукцию анти-ГА в титрах 6,9 log2 у голубей и 7,2 log2 у цыплят (19). Создана инактивированная вакцина против ПМВ второго сероварианта (1а).

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1.Амиров А.Х. Тез. докл. н.-пр. конф. ВНИВВиМ, Покров, 1992 :158. 1а.Амдий Э.М. Тез. докл. н.-пр. конф. ВНИИЗЖ, Владимир, 1995 :283. 1б.Амдий Э.М. Там же, :280. 2.

Говоркова Е.А. и др. Вопросы вирус, 1991 :59. 3. Исаченко В.А. и др. Экология вирусов, М, 1975, 3, :67. 4.Козаков С.Л. и др. Тез. докл. н.-пр. конф, ВНИИВВиМ, Покров, 1992,

: 155. 4а.Козаков С.Л. и др. Тез. докл. н.-пр. конф, ВНИИЗЖ, Владимир, 1995,281. 5.Вопросы вирусол. “Парамиксовирусы птиц”, 1991, 1, :59. 6.Лагуткин H.A. и др. Тез. докл. н.-пр. конф, ВНИИВВиМ, Покров,1992, 156. 7.Саятов М.Х. и др. Вопр. Вирус., 1992, : 116. 8.Сюрин В.Н. и др. Диагн. вир. бол. жив, М., ВО Агропромизд, 1991. 9.Тер-Петросян В.Э. и др. Докл. АН Казахстана, 1992, 2 :66. Ю.Фомина Н.В. и др. Вир. жив, MBA, 1991. 11.

Черных А.А. и др. Тез. докл. н.-пр. конф, ВНИИВВиМ, Покров, 1992 :326. lla.Al Afaleq A.

J. et. al. Rev.e'lev et med vet poys trop, 1993, 46 :545. 12.Alexander D.J. Vet Bull, 1980, 50 :737. 13.Bankowski R.A. et.al. Sci, 1960, 132 :292. 14.Eleury H.J. Bull Soc path exot, 1982, 75, 1

:9. 15.Franciosi C. et. al. Bull Inst sieroter, Milan, 1981, 60, 3 :225. 16Paterson R.C. et.al. J Cell Biochem, 1991, Suppl 15Ec-90. 17.Ramachondron S. et.al. Indian Vet J, 1988, 65, 10:855. 18. Vindevogel H. et. al. Ann Vet Med, 1992, 136, 5, 347: 19.Wawrzkiewic Z. S. et. al. Med Vet, 1991,

47, 3 :108