МЕТОДЫ ОПРЕДЕЛЕНИЯ ПОКАЗАТЕЛЕЙ СИСТЕМЫ АНТИОКСИДАНТНОЙ ЗАЩИТЫ ОРГАНИЗМА
Реактивы: 0,2 ммоль/л раствор ЭДТА-Ка.
37 г ЭДТА-1Ча (трилон Б) растворяют в 500 мл дистиллированной воды;0,05 моль/л раствор тетраметилендиамина (ТЭМЭД). 0,28 мл ТЭМЭД растворяют в 40 мл 0,2 ммоль/л раствора ЭДТА-№. Реактив годен для использования через 2 ч после приготовления в течение 1 сут;
0,034 ммоль/л раствор рибофлавина. 1,3 мг рибофлавина растворяют при перемешивании на магнитной мешалке в течение 20—30 мин в 100 мл дистиллированной воды. Раствор хранят в склянке из темного стекла. Годен в течение рабочего дня;
0,85 ммоль/л раствор пара-нитротетразолия хлористого (п-НТХ). 32 мг п-НТХ растворяют в 100 мл дистиллированной воды. Реактив растворяется медленно, поэтому следует это делать на магнитной мешалке с подогревом до 50 °С. Хранят в склянке из темного стекла в течение 1 мес;
0,1 моль/л фосфатный буфер, pH 7,8. 1,3616 г КН2РО4 растворяют в 100 мл воды; 16,036 г Ыа2НР04 • 2Н20 растворяют в 900 мл воды. К одной части раствора калия фосфата добавляют 9 частей раствора натрия фосфата и pH определяют в помощью рН-метра;
0,1 моль/л буфер, pH 9,85. Для этого половину буферного раствора с pH 7,8 оставляют, а другую половину с помощью концентрированного раствора КОН доводят до pH 9,85;
1%-ный раствор калия йодида;
0,9%-ный раствор натрия хлорида;
хлороформ-этаноловая смесь (ХЭС) в соотношении 5 : 3 (об/об.).
Оборудование: ФЭК; лампа дневного света мощностью 40 Вт, длина трубки 1 м и более; штатив для пробирок на 20—30 гнезд в один ряд, закрытый спереди и сзади черной бумагой; весы аналитические; магнитная мешалка; секундомер; центрифуга рефрижераторная; холодильник бытовой; баня водяная; колбы мерные; пипетки с делениями разные; пробирки химические и центрифужные.
Ход определения.
Для исследования берут эритроциты, отмытые трижды холодным 0,9%-ным раствором натрия хлорида из 0,5 мл гепаринизированной крови, добавляют 5 мл охлажденной до 1—4 °С дистиллированной воды и ставят в ледяную баню на 15 мин для полного гемолиза. Затем 1,5 мл гемолизата переносят в центрифужные пробирки, прибавляют по 0,5 мл ХЭС, перемешивают и оставляют стоять на 10—15 мин в ледяной бане^ После этого пробирки центрифугируют при 0—4 "С и 3000 мин 1 в течение 15 мин. Надосадочную жидкость (бесцветную или слегка желтую) разбавляют дистиллированной водой в 20 раз. Половину полученного раствора (биологического материала) оставляют в химических пробирках в ледяной бане, другую половину помещают в кипящую водяную баню на 10 мин (вода должна постоянно кипеть) для инактивации фермента.Для каждой пробы берут по три химических пробирки, ставят в закрытый штатив и добавляют в них растворы реактивов и биологический материал (табл. 31).
1 |
0,1 моль/л фосфатный буфер, pH 7,8 |
1,0 |
1,0 |
|
2 |
0,1 моль/л фосфатный буфер, pH 9,85 |
— |
— |
2,0 |
3 |
0,05 моль/л ТЭМЭД |
1,0 |
1,0 |
— |
4 |
0,85 моль/л п-нитратетразоля |
1,0 |
1,0 |
1,0 |
5 |
Вода дистиллированная |
5,0 |
5,0 |
5,0 |
6 |
Биологический материал (БМ) |
0,2 |
— |
— |
7 |
БМ после кипячения |
0,2 |
0,2 |
|
8 |
0,034 ммоль/л раствор рибофлавина |
2.0 |
2,0 |
2,0 |
31. Порядок приготовления растворов для определения активности КФ 1.15.1.1
N°
п/п
Реактив
Опыт,
мл
Контроль,
мл
Контроль на реактив, мл
Содержимое пробирок старательно перемешивают и штатив с ними устанавливают на расстоянии 20 см от лампы дневного света.
Включают лампу, прогревают ее в течение 10 мин. Открывают переднюю стенку штатива, облучают пробы в течение 5 мин (по секундомеру) и закрывают переднюю стенку штатива.Во все пробирки добавляют как можно быстрее по 1 мл 1%-но- го раствора калия йодида (для остановки реакции) и сразу интенсивно перемешивают.
Измеряют оптическую плотность каждой пробы при зеленом светофильтре в кюветах с ходом луча 20 мм против дистиллированной воды.
Количество гемоглобина в гемолизатах определяют цианидным методом с помощью специальных наборов НПО «Биореактив».
Процент торможения СОД образования фармазана п-НТХ определяют по формуле
Т= Егк~ Е°" -100,
Ек~Ещ,
где Т — процент торможения реакции; Ек — оптическая плотность контрольной пробы; Еоп — оптическая плотность опытной пробы; Екр — оптическая плотность пробы контроля на реактивы; 100 — коэффициент для перевода в проценты.
Принято считать, что 50 % ингибирования реакции соответствует одной относительной единице (1 отн. ед.) активности фермента.
Количество отн. ед. активности фермента, внесенного в пробу, рассчитывают по формуле
м= 10(0,026 • Т— 1,3)^
где М — количество отн. ед. активности в пробе; Т — процент торможения реакции.
Активность СОД в пересчете на содержание гемоглобина рассчитывают по формуле
МЕ„
0,1236?гем ’
где А — активность фермента (СОД), ед. акт/мг гемоглобина; М — количество единиц фермента в пробе; Ест — оптическая плотность стандартного раствора, содержащего 59,75 мг гемоглобинцианида в 100 мл; ?гем — оптическая плотность опытной пробы гемолизата при определении гемоглобина.
Примечания. 1. Пробы гепаринизированной крови можно хранить при 4 °С не более 1 сут. 2. Химические пробирки, в которых ведется определение активности фермента, должны быть одинаковыми по диаметру, толщине стенок и цвету стекла. 3. В добавке биологического материала должна содержаться примерно 1 ед.
активности фермента (степень торможения должна составлять 35—55 %). 4. При определении активности СОД в эритроцитах крови птиц отмытую эритроцитарную массу из 0,5 мл крови лизируют 2,5 мл холодной дистиллированной воды. Центрифугируют при 3000 мин в течение 15 мин для осаждения ядер эритроцитов. Берут 1,5 мл надосадочной жидкости и далее продолжают исследование, как указано выше.Клиническое значение. Супероксиддисмутазавстречается во всех клетках и является ключевым ферментом антиокси- дантной защиты в организме, которая попарно дисмутирует (превращает) супероксидные анионы в пероксид водорода и молеку- _ _ 2Н+
лярный кислород (02 + 02 + -» Н2О2 + 02) и тем самым
СОД
защищает клетки от токсичных форм кислорода в самом начале процесса ПОЛ. Активность СОД в крови и печени повышается в 1,5—5 раз во всех случаях, когда в клетках нарастает концентрация
супероксидных анионов (02 ), что наблюдается при заболеваниях желудочно-кишечного тракта, легких, инфаркте миокарда и других заболеваниях сердца и сосудов, термических ожогах, болезнях печени, особенно при жировой дистрофии, при онкологических поражениях, химических отравлениях, эмоционально-болевых и других стрессах.
Снижение активности СОД отмечено при ишемии миокарда, печени, почек, скелетных мышц, хотя уровень липидных пероксидов в этих случаях возрастает. Аналогично снижается активность СОД при хроническом гепатите, фиброзе, циррозе, глубоких деструктивных поражениях печени.
Показатели активности СОД у здоровых взрослых животных и птиц колеблется от 1,0 л 7,5 ед. акт/мг гемоглобина.
Источники: 11, 26, 47.
Еще по теме МЕТОДЫ ОПРЕДЕЛЕНИЯ ПОКАЗАТЕЛЕЙ СИСТЕМЫ АНТИОКСИДАНТНОЙ ЗАЩИТЫ ОРГАНИЗМА :
- Порядок определения показателей экономической эффективности применения удобрений:
- МЕТОДЫ ЗАЩИТЫ РАСТЕНИЙ ОТ ВРЕДИТЕЛЕЙ
- Интегрированная система защиты винограда от болезней и вредителей.
- VI. РАЗРАБОТКА СРЕДСТВ И МЕТОДОВ ЗАЩИТЫ ЛОШАДЕЙ ОТ ГАСТРОФИЛЕЗА
- Определение активности а-амилазы в сыворотке крови, моче, дуоденальном содержимом амилоклассическим методом со стойким крахмальным субстратом (метод Каравея).
- МЕХАНИЗМ ДЕЙСТВИЯ НОВОКАИНА НА РАЗЛИЧНЫЕ СИСТЕМЫ ОРГАНИЗМА
- 1.5. Учет организмов как специфический метод экологии
- 6.1.2. Роль наследственных и средовых факторов в определении половой принадлежности организма
- МЕТОДЫ ОПРЕДЕЛЕНИЯ ВИТАМИНОВ
- МЕТОДЫ ОПРЕДЕЛЕНИЯ МИКРОЭЛЕМЕНТОВ
- МЕТОДЫ ОПРЕДЕЛЕНИЯ МИКОТОКСИНОВ
- МЕТОДЫ ОПРЕДЕЛЕНИЯ ФОСФОРОРГАНИЧЕСКИХ ПЕСТИЦИДОВ