Разбор проб на фильтре

  Удобны более рыхлые целлюлозные фильтры (например, «белая полоса»), т.к. проба быстрее процеживается. Размер фильтра определяется размером чашки Петри и тем, насколько проба чистая. Если в пузырьке мало грязи и животных, для экономии сил лучше использовать небольшие фильтры. Для равномерного просмотра фильтр разлиновывают на полосы с интервалом около 1 см простым карандашом или, шариковой ручкой (отмечено, что зеленая паста, в отличие от других, обычно не растворяется в спирте). Фильтр складывают вчетверо, помещают в воронку и, смачивая водой, расправляют, прижимая к стенкам. Содержимое пузырька выливают на фильтр, остатки смывают водой туда же. Нужно убедиться, что в пузырьке и на пробке не осталось животных: просмотреть внутреннюю поверхность пузырька, вращая его по спирали под бинокулярным микроскопом. Если проба очень грязная, нужно распределить ее на несколько фильтров.
Когда жидкость стечет, фильтр осторожно достают из воронки и расправляют на чашке Петри так, чтобы между ним и стеклом не было пузырей воздуха. Кучку из средней части аккуратно распределяют по всему фильтру, добавляя из пипетки воды. Фильтр просматривают под бинокулярным микроскопом несколько раз (не менее двух!), двигаясь вдоль линеек. Черный фон снизу предпочтительнее, поскольку фильтр приобретает на нем сероватый оттенок, на котором белые микроартроподы лучше заметны. По мере подсыхания фильтра его увлажняют водой из пипетки, следя за тем, чтобы вода не смывала микроартро- под за пределы фильтра.
Микроартропод вынимают с помощью одной или двух препаровальных игл, концы которых могут быть дополнительно заточены (с помощью наждачной бумаги) или, наоборот, уплощены и слегка загнуты.
Микроинструменты могут быть разнообразными в зависимости от манеры подхватывать объект.
Всех животных изучаемой группы при количественных учетах необходимо вынуть из пробы. В очень редких случаях (наличие в пробе всего 1-2 видов с высокой численностью) возможен простой подсчет количества экземпляров без изготовления препаратов. Так, при пропуске в среднем 1 экземпляра из 10, недоучет численности составит 10%. Если животных в пробе мало (до 15-20), лучше записывать их количество в блокнот для дальнейшего контроля.
Типичные ошибки при разборе проб: микроартроподы, незамеченные под крупными частицами субстрата, под этикеткой, которую забыли осмотреть снизу, прилипшие к другим более крупным животным; животные, не замеченные на линиях фильтра; редкие крупные экземпляры, когда все внимание сосредоточено на поиске незаметных и мелких объектов; микроартроподы, смьггые за пределы фильтра при добавлении воды.
Извлечение микроартропод из сильно загрязненных проб
Если пробирка после эклекторной выгонки наполовину и более заполнена осыпавшейся грязью (что часто наблюдается, например, при выгонке из чернозема), можно применить масляную флотацию. Пробу со спиртом (нужна высокая концентрация) смешивают с жидким вазелиновым маслом, заливают водой, отстаивают. Микроартроподы накапливаются в пленке масла на поверхности, их собирают поштучно или фильтруя всю пленку. Затем объекты отмывают от масла моющими средствами или спиртом. 
<< | >>
Источник: Потапов М.Б., Кузнецова Н.А.. Методы исследования сообществ микроартропод: пособие для студентов и аспирантов. 2011

Еще по теме Разбор проб на фильтре:

  1. IV.2. ПОГЛОЩЕНИЕ АЭРОИОНОВ ВНЕШНЕГО ВОЗДУХА РАЗНЫМИ ФИЛЬТРАМИ И ПРИ КОНДИЦИОНИРОВАНИИ
  2. Учет численности популяций с помощью проб
  3. 3.2.2.3. Инструментальные условные рефлексы (или обучение методом проб и ошибок)
  4. 2.4.2. Сравнительная характеристика обучения животных методом «проб и ошибок» в исследованиях Торндайка
  5. Определение подвижных форм фосфора по Мачигину.
  6. Обнаружение фтора в патологическом материале с помощью ализарин- циркониевого лака
  7.   Определение свободного аминного азота в сыворотке крови по методу Г. А. Узбекова в модификации 3. С. Чулковой.  
  8. Учет с фиксированным уровнем точности и метод обратного биномиального выбора
  9. 2.2.1.1. Сравнительная оценка методов выявления грибов рода Malassezia на покровных тканях животных
  10. Отбор растительной пробы
  11. Бактерии
  12. СИНТЕЗ И РАЗЛОЖЕНИЕ ГУМУСОВЫХ ВЕЩЕСТВ
  13.     Определение нитритов в кормах, крови и патологическом материале с использованием реактива Грисса.  
  14.   Определение нитратов в кормах, крови, молоке и патологическом материале с использованием реактива Грисса.